MIC（最低抑菌浓度）测定板：药物在板上按 2 倍逐级稀释，培养后看哪一孔细菌停止生长，那一孔的浓度就是 MIC。填好参数配板，培养后把各孔生长情况点进板面，自动算出每行 MIC 并给出敏感 / 中介 / 耐药提示。
常规药敏一律用 2 倍稀释，一般不用改
每行末尾自动附 2 个对照孔：GC 生长对照（无药 + 菌，必须生长）、ST 无菌对照（仅培养基，必须不长）
标准微量稀释板为 100 µL，一般不用改
起始浓度 = 梯度第 1 孔（最高浓度）。建议覆盖预期 MIC 的 2–8 倍之上；不确定时参考该药常规治疗浓度或先做预实验。
培养结束后逐孔观察：澄清（无生长）还是浑浊（有生长）？单击孔切换：＋有生长 → −无生长 → 清除。已判读的孔着色，MIC 孔自动描边。
MIC ≤ 敏感上限 → 敏感(S)；≥ 耐药下限 → 耐药(R)；之间 → 中介(I)。不同药物折点不同，请查最新 CLSI M100 / EUCAST 折点表。
板内稀释法流程（每孔终体积 100 µL：2× 药液 50 µL + 2× 菌悬液 50 µL）： ① 第 1 孔加 2× 最高浓度药液 50 µL；② 第 2–10 孔预加 MHB 肉汤 50 µL； ③ 第 1 孔混匀后取 50 µL 转移至第 2 孔，逐孔倍比稀释，第 10 孔混匀后弃 50 µL； ④ 全部试验孔与 GC 孔各加 2× 菌悬液 50 µL（终浓度约 5×10⁵ CFU/mL，取 0.5 麦氏比浊管 菌液稀释 150 倍）； ⑤ ST 孔仅加 MHB 100 µL；⑥ 35–37 ℃ 培养 16–20 h 后判读。
MIC 判定：肉眼观察（或 OD₆₀₀ ≥ 0.1 视为生长），无可见生长的最低药物浓度即为 MIC。 GC 孔必须有生长、ST 孔必须无生长，否则实验无效。
S / I / R 判定：MIC 与 CLSI M100 或 EUCAST 公布的临床折点比较：MIC ≤ 敏感折点报敏感（S，常规剂量有效）；≥ 耐药折点报耐药（R，常规剂量无效）；之间报中介（I，加大剂量或药物浓缩部位可能有效）。折点因药物和菌种而异，务必查最新版本。
质控提示：每批实验建议同步质控菌株（如大肠埃希菌 ATCC 25922、金葡菌 ATCC 29213）， MIC 应落在 CLSI M100 质控范围内；跳孔生长常为污染，非单调模式请复核。
本工具仅供科研参考，不构成临床诊疗依据；药敏报告请遵循 CLSI M100 / EUCAST 最新折点表。